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    分子克隆實(shí)驗(yàn)的流程及注意事項(xiàng)--二、TOPO克隆

    發(fā)布時(shí)間: 2025-03-18  點(diǎn)擊次數(shù): 1017次

    二、TOPO克隆

    引物設(shè)計(jì)與PCR擴(kuò)增
    1. 目的片段 PCR 擴(kuò)增引物合成時(shí),要求引物 5’端不可磷酸化修飾;

    2. 建議使用高保真酶進(jìn)行目的片段的 PCR 擴(kuò)增,并摸索退火溫度,優(yōu)化反應(yīng)體系和程序。


    PCR產(chǎn)物的純化回收
    1.PCR 反應(yīng)后,產(chǎn)物應(yīng)當(dāng)進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳鑒定,判斷是否存在目的大小的條帶;

    2.推薦使用切膠回收的方式純化 ( 切膠時(shí)間最好控制在 3min 內(nèi),避免紫外照射對(duì) DNA 的損傷 ),回收濃度使用 NanoDrop/OneDrop 等儀器檢測(cè),濃度應(yīng)當(dāng)≥ 30ng/μl,并跑膠鑒定是否僅存在目的條帶;

    3.回收濃度低時(shí),可通過增加 PCR 反應(yīng)體系,采取多管反應(yīng)單管回收的方式,提高回收產(chǎn)物的濃度。


    目的片段連接至載體

    1.連接反應(yīng)體系按照說明書要求投入,各組分投入體積≥ 1μl,若濃度過高可稀釋后使用;

    2.連接反應(yīng)溫度可嘗試 25°C或 37°C,時(shí)間 5min,若不長(zhǎng)克隆或克隆空載體 / 假陽(yáng)性,時(shí)間可嘗試延長(zhǎng)至 30min;

    3.連接反應(yīng)建議在 PCR 儀中進(jìn)行。


    感受態(tài)轉(zhuǎn)化涂板

    1.連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化的感受態(tài)細(xì)胞選擇使用 DH5α、Fast-T1 等克隆用化學(xué)感受態(tài)細(xì)胞;

    2.感受態(tài)細(xì)胞不可反復(fù)凍融使用,-80°C取出后建議一次用完;

    3.重組產(chǎn)物體積與感受態(tài)細(xì)胞體積的比例為 1:10,推薦 10μl 重組產(chǎn)物加入至 100μl 感受態(tài)細(xì)胞或 5μl 重組產(chǎn)物加入至 50μl 感受態(tài)細(xì)胞;

    4.熱激時(shí)間:按照感受態(tài)細(xì)胞說明書操作進(jìn)行;

    5.平板抗生素抗性:平板使用抗性與轉(zhuǎn)化的載體抗性需保持一致;

    6.菌液涂板體積:將菌液離心(2500×g,3min),移液槍吸取丟棄多余 LB 培養(yǎng)基,保留100μl 重懸后全部涂板;或吸取合適體積涂板。


    單克隆菌落PCR鑒定

    1.挑取平板中體積大小適中的單克隆菌落,避免選擇過大或過小的單克隆菌落;

    2.挑取數(shù)個(gè)單克隆菌落進(jìn)行鑒定分析;

    3.挑取的菌落放入已添加 10μl ddH2O 的 1.5ml 或 2ml EP 管中溶解混勻后,吸取 1-2μl 作為PCR 反應(yīng)(10/20μl 體系)模板;

    4.推薦使用一對(duì)分別位于片段和載體的上下游引物進(jìn)行 PCR 鑒定。



    常見問題分析:

    不長(zhǎng)克隆

    1. 片段類型錯(cuò)誤:只兼容 PCR 擴(kuò)增產(chǎn)物,且引物 5’端不可磷酸化修飾;
    2. 片段投入不符合要求:片段應(yīng)當(dāng)切膠回收,且回收濃度不低于 30ng/μl;濃度過高時(shí)需稀釋使用,保證體系各組分投入體積不小于 1μl;片段投入量應(yīng)按照說明書公式計(jì)算;
    3. 連接反應(yīng)不適當(dāng):反應(yīng)應(yīng)在 PCR 儀中進(jìn)行,溫度可設(shè)置 25 或 37°C,連接時(shí)間可從 5min延長(zhǎng)至 30min。


    空載體 / 假陽(yáng)性
    1. PCR 擴(kuò)增產(chǎn)物不單一:優(yōu)化 PCR 體系,提高特異性;對(duì)目的片段切膠回收;鑒定更多單克?。?br role="presentation" style="padding: 0px; margin: 0px; color: transparent; position: absolute; white-space: pre; cursor: text; transform-origin: 0% 0%;"/>2. 片段投入不符合要求:片段應(yīng)當(dāng)切膠回收,且回收濃度不低于 30ng/μl;濃度過高時(shí)需稀釋使用,保證體系投入體積不小于 1μl;片段投入量應(yīng)按照說明書公式計(jì)算;
    3. 連接反應(yīng)不適當(dāng):反應(yīng)應(yīng)在 PCR 儀中進(jìn)行,溫度可設(shè)置 25 或 37°C,連接時(shí)間可從 5min延長(zhǎng)至 30min;
    4. 菌液 PCR 用酶不適合:PCR 酶活應(yīng)當(dāng)不受雜質(zhì)影響,引物不應(yīng)選擇插入片段 PCR 用引物進(jìn)行檢測(cè)。


    測(cè)序突變
    1. 測(cè)序克隆數(shù)過少:測(cè)序單克隆數(shù)只有 1 個(gè)時(shí),測(cè)序信息部分可信,建議多測(cè)幾個(gè)單克隆,檢查突變處的測(cè)序信號(hào)是否有問題,突變是否從模板引入;
    2. 突變位置:若堿基突變位于引物處,建議重新合成引物再次實(shí)驗(yàn);位于其他部位的突變,應(yīng)當(dāng)使用高保真酶重新制備模板再次實(shí)驗(yàn)。


    測(cè)序片段不正確
    1. PCR 擴(kuò)增產(chǎn)物不單一:優(yōu)化 PCR 體系,提高特異性;對(duì)目的片段切膠回收;鑒定更多單克隆;

    2. 模板存在 Amp/kana 抗性的質(zhì)粒:對(duì)目的片段進(jìn)行切膠回收。


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