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    懸浮細(xì)胞的瞬時(shí)轉(zhuǎn)染操作

    發(fā)布時(shí)間: 2024-04-29  點(diǎn)擊次數(shù): 1250次

    細(xì)胞轉(zhuǎn)染前的準(zhǔn)備:

    懸浮細(xì)胞的瞬時(shí)轉(zhuǎn)染操作

    1.細(xì)胞:

    貼壁生長細(xì)胞:一般要求在轉(zhuǎn)染前一日,必須用胰酶處理成單細(xì)胞懸液,重新接種于培養(yǎng)皿或瓶,轉(zhuǎn)染當(dāng)日的細(xì)胞密度以70%-90%(貼壁細(xì)胞),最好在轉(zhuǎn)染前2-4h換一次新鮮培養(yǎng)液。


    懸浮細(xì)胞:轉(zhuǎn)染前12-16h進(jìn)行懸浮細(xì)胞傳代,傳代后適宜的細(xì)胞密度為20-40x104/mL。臺(tái)盼藍(lán)染色進(jìn)行活細(xì)胞計(jì)數(shù)保持活細(xì)胞比在95%以上。


    提前將293F細(xì)胞的密度調(diào)整至合適的密度后(2×106 - 4×106細(xì)胞/ml)于37°C搖床培養(yǎng)2-4h后進(jìn)行轉(zhuǎn)染。注意,參與轉(zhuǎn)染的細(xì)胞必須是培養(yǎng)三代或以上的穩(wěn)定細(xì)胞株。


    2.DNA:使用去內(nèi)毒素質(zhì)粒大提試劑盒提取質(zhì)粒,于生物安全柜/超凈臺(tái)用0.22um濾頭過濾除菌。


    3.稀釋液:于生物安全柜/超凈臺(tái)用0.22 μm濾頭過濾除菌。


    4、轉(zhuǎn)染試劑:轉(zhuǎn)染試劑如PEI溶液長期儲(chǔ)存于- 20℃,不可反復(fù)凍融,溶液在4℃放置不超過一周。


    操作步驟(懸浮細(xì)胞):

    1、取一支已滅菌的Ep管,加入一定量的DNA,以相應(yīng)體積的300 mM NaCl稀釋,用槍頭混勻后靜置5 min;

    另取一支已滅菌的Ep管,加入相應(yīng)體積的300 mM NaCl稀釋對(duì)應(yīng)體積的PEI溶液用槍頭混勻后靜置5 min(稀釋液與DNA、PEI的總體積應(yīng)為轉(zhuǎn)染體積的5%)。

    將質(zhì)粒和PEI溶液混合,槍頭混勻后靜置一段時(shí)間,使DNA與PEI形成穩(wěn)定的聚合物。

    2、從搖床中取出293F細(xì)胞。用1 mL移液槍滴緩慢滴加轉(zhuǎn)染混合液,邊加邊搖晃搖瓶使轉(zhuǎn)染更加充分。

    3、轉(zhuǎn)染后將懸浮細(xì)胞置于搖床中培養(yǎng),條件為37℃、8%CO2、110 rpm。每隔24 h進(jìn)行細(xì)胞計(jì)數(shù)并用臺(tái)盼藍(lán)染色液觀察細(xì)胞的存活率。

    注意事項(xiàng):

    1、DNA純度:使用去內(nèi)毒素的質(zhì)粒大提試劑盒,細(xì)菌產(chǎn)生的內(nèi)毒素對(duì)細(xì)胞狀態(tài)有很大的影響。

    用于轉(zhuǎn)染的質(zhì)粒DNA必須無蛋白質(zhì),無RNA和其他化學(xué)物質(zhì)的污染,確保質(zhì)粒OD值A(chǔ)260/A280在1.8~2.0之間。

    提完質(zhì)粒后進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證DNA的純度,通常情況下DNA為超螺旋狀態(tài)(此狀態(tài)下轉(zhuǎn)染效率更高)。

    2、優(yōu)化條件

    質(zhì)粒不同,所轉(zhuǎn)染的細(xì)胞不同及定量的準(zhǔn)確性等因素會(huì)導(dǎo)致在一些情況下轉(zhuǎn)染效率低,蛋白表達(dá)量低,基于這種情況需要對(duì)質(zhì)粒轉(zhuǎn)染試劑的配比、DNA的濃度、質(zhì)粒與轉(zhuǎn)染試劑的聚合時(shí)間進(jìn)行優(yōu)化。

    3、轉(zhuǎn)染的稀釋液

    研究報(bào)道,300 mM NaCl溶液稀釋DNA和轉(zhuǎn)染試劑轉(zhuǎn)染效率比普通培養(yǎng)基高。

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