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    怎么處理植物組織培養(yǎng)過(guò)程中出現(xiàn)的各種污染

    發(fā)布時(shí)間: 2023-04-07  點(diǎn)擊次數(shù): 2510次

    1. 培養(yǎng)基的配制注意事項(xiàng)

    植物組織培養(yǎng)經(jīng)常用到 MS 培養(yǎng)基,包含十幾種化合物。因?yàn)橛行┗衔锵嘤鰰?huì)發(fā)生化學(xué)反應(yīng)產(chǎn)生沉淀,影響培養(yǎng)基的營(yíng)養(yǎng)成分,準(zhǔn)備 MS 培養(yǎng)基需要配制多種高倍母液。且配制母液時(shí),尤其涉及大量元素的母液時(shí),一定要等一種成分溶解之后,再緩慢的添加另一種成分,切記「一鍋煮」,即不能將各種化合物一齊添加進(jìn)去??蛇x用MS 培養(yǎng)基基鹽在自行加入蔗糖和瓊脂配制 MS 培養(yǎng)基,既經(jīng)濟(jì),更高效。

    2. 滅菌后培養(yǎng)基不凝膠或者凝膠偏軟

    植物凝膠、瓊脂都對(duì)酸性條件敏感,pH 值低于 5 很難成膠或凝膠偏軟,切記高壓滅菌前調(diào)節(jié)培養(yǎng)基 pH 值(5.5 - 6.0)。植物凝膠對(duì)二價(jià)陽(yáng)離子濃度有要求,也就是相對(duì)于 MS 培養(yǎng)基,1 / 2MS 培養(yǎng)基中植物凝膠要適當(dāng)增加用量。另外滅菌后,倒出培養(yǎng)基前一定將培養(yǎng)基搖勻(帶防燙手套),因?yàn)槭黔傊芏却蟮讓雍扛撸菀自斐膳囵B(yǎng)基強(qiáng)度不均勻。選擇 Coolaber 改良 MS 培養(yǎng)基(PM10121,pH5.8±0.2)含蔗糖和瓊脂/植物凝膠,可以省去調(diào) pH 步驟。

    3. 水解酪蛋白有酸水解和酶水解之分,在使用過(guò)程中有無(wú)區(qū)別?

    水解酪蛋白對(duì)胚狀體、不定芽的分化有良好的促進(jìn)作用,通常用量在 500 mg/L,不管是酸解還是酶解,作用都是一樣的,酶解更有利于發(fā)揮其作用。

    4. 怎么溶解組培常用植物激素?

    IAA、IBA、GA、玉米素、多效唑等應(yīng)先溶解于少量 95% 的乙醇中,再加水定容配制成母液;如有結(jié)晶析出,可考慮用 1 / 10 體積的乙醇溶解后再定容;2,4 -D 易溶于堿性水溶液,可用少量 1mol/L 的 NaOH 溶液溶解后再慢慢加水定容;KT 和 6 -BA 先用少量的 HCL 溶解,再加水定容到一定的濃度。

    5. 細(xì)胞分裂素使用濃度?

    一般情況下在培養(yǎng)基中加入 0.1~10.0 mg/L 的細(xì)胞分裂素(6 -BA/KT/ZT),多數(shù)用 1.0~2.0 mg/L,KT 濃度為 0.5~2 mg/L,這個(gè)也要根據(jù)實(shí)驗(yàn)材料來(lái)調(diào)整。細(xì)胞分裂素可以單獨(dú)使用也可以與細(xì)胞生長(zhǎng)素配合使用。

    6. 哪些植物激素能高壓滅菌,哪些不能高壓滅菌。

    IBA、NAA、6 -BA、2,4 -D 可高溫高壓滅菌。 IAA、GA3、茉莉酸等不可高溫高壓滅菌,否則會(huì)分解失效,該類(lèi)植物激素配制母液后需用 0.22 微孔濾膜過(guò)濾除菌,待培養(yǎng)基冷卻(50 - 60℃)后尚未凝膠前加入混勻。

    7. 培養(yǎng)基的 pH 值會(huì)凝膠硬度有無(wú)影響。

    有影響。若將培養(yǎng)基 pH 值調(diào)的過(guò)高(大于 6),則培養(yǎng)基偏硬,增加接種的阻力,會(huì)對(duì)外植體造成損傷。若將培養(yǎng)基 pH 值調(diào)的過(guò)低(小于 4.5),則培養(yǎng)基不能凝固,起不到固定外植體的作用。一般將培養(yǎng)基的 pH 調(diào)節(jié)至 5.5~6.0 為宜。

    8. 滅菌過(guò)程會(huì)否影響培養(yǎng)基的 pH 值?

    培養(yǎng)基中的蔗糖和激素在高溫滅菌過(guò)程中容易酸化,培養(yǎng)基 pH 值滅菌后會(huì)有所下降,滅菌前培養(yǎng)基的 pH 值偏低可能導(dǎo)致培養(yǎng)基不凝或偏軟。要求偏酸性的培養(yǎng)基可適當(dāng)增加瓊脂或植物凝膠的用量。

    9. 應(yīng)用 75% 的酒精進(jìn)行種子消毒的過(guò)程中需要注意的問(wèn)題

    種子在消毒過(guò)程中使用 75% 的酒精使用應(yīng)慎重,酒精滲透力強(qiáng),消毒時(shí)間過(guò)長(zhǎng)會(huì)直接影響種子發(fā)芽率,所以建議消毒時(shí)間不應(yīng)超過(guò) 1 min。

    10. 原始繁殖材料的消毒

    組培中,作為原始繁殖材料的外植體消毒,直接影響整個(gè)培養(yǎng)過(guò)程的進(jìn)行。從室外采回來(lái)的外植體需進(jìn)行消毒,首先用自來(lái)水沖洗外植體,沖洗時(shí)間可根據(jù)采集部位不同而定,一般在 5~15 分鐘即可;關(guān)鍵在于在超凈臺(tái)中進(jìn)行藥劑的處理,常用的藥劑處理有 70% 的乙醇溶液、9% 的次氯酸鈉溶液、和 0.1~0.2% 的升-汞溶液,具體可根據(jù)實(shí)驗(yàn)材料而定。應(yīng)注意的是經(jīng)升-汞滅菌的外植體必須用無(wú)菌水沖洗 6~8 次。

    11. 怎么處理植物組織培養(yǎng)過(guò)程中出現(xiàn)的各種污染?

    植物組織培養(yǎng)過(guò)程中的污染來(lái)源主要分為 3 種,真菌、細(xì)菌和組織培養(yǎng)過(guò)程中的污染源。在操作過(guò)程中,難免有菌落入培養(yǎng)基或植物材料上,而導(dǎo)致污染。另外,不正確操作也會(huì)增加污染機(jī)率。預(yù)防措施:通風(fēng),保持室內(nèi)空氣干燥,紫外殺菌等。污染物品和污染培養(yǎng)基不要在培養(yǎng)室近距離開(kāi)瓶洗刷。

    污染原因判斷:

    培養(yǎng)基污染:若污染菌類(lèi)是零星分散在培養(yǎng)基中,則可確定是人為引起的污染。比如培養(yǎng)基滅菌不干凈,開(kāi)瓶時(shí)間過(guò)長(zhǎng),滅菌后存放時(shí)間過(guò)長(zhǎng)等; 高溫蒸汽滅菌器的溫度、壓力、時(shí)間沒(méi)有正確設(shè)置;過(guò)濾滅菌過(guò)程中濾膜孔徑選擇、過(guò)濾滅菌器的滅菌處理、過(guò)濾滅菌操作等均會(huì)影響培養(yǎng)基的滅菌效果。

    措施:嚴(yán)格按照實(shí)驗(yàn)要求,滅菌規(guī)程操作。

    外植體污染:若污染菌類(lèi)是從材料周?chē)L(zhǎng)起,且發(fā)生在 5 天以后,則說(shuō)明是材料帶的內(nèi)生菌。可能是接種用具滅菌不干凈,接種時(shí)材料被污染;若從培養(yǎng)基以下開(kāi)始長(zhǎng)菌,發(fā)生時(shí)間較早,且有從里向外的趨勢(shì),則說(shuō)明是切口引起的污染,原因可能是未剪去兩個(gè)切口或者雖剪去切口但是所用器具帶菌;或者是未及時(shí)發(fā)現(xiàn)污染苗,接種過(guò)程中引起交叉污染;

    措施:取材時(shí)應(yīng)仔細(xì)選擇,以減少污染的發(fā)生。

    操作環(huán)節(jié)污染:接種室是否清潔、干燥、密封,是否經(jīng)常用紫外燈照射、甲醛熏蒸、70% 的酒精噴霧殺菌等;超凈工作臺(tái)擺放物品雜亂,長(zhǎng)時(shí)間不換濾網(wǎng),導(dǎo)致凈化能力降低;接種用具滅菌不干凈引起污染;操作不正確等。

    措施:每次接種前半個(gè)小時(shí),用 20% 的新潔爾擦洗室內(nèi)設(shè)備、工作臺(tái)面,再用紫外燈照射 20 min。還可以噴灑 70% 的乙醇進(jìn)行消毒。除了培養(yǎng)基、接種材料、器具和用具保證無(wú)菌外,同時(shí)在接種時(shí)還需要嚴(yán)格進(jìn)行無(wú)菌操作。

    出現(xiàn)污染后處理措施:

    • 真菌污染后,如果已形成孢子,則必須經(jīng)高壓滅菌后扔掉;若使細(xì)菌污染,只要及時(shí)發(fā)現(xiàn),將材料上部未感染菌的部分剪下轉(zhuǎn)接,材料仍可以用。

    • 用抗生素等殺菌藥劑的處理。但至今還未發(fā)現(xiàn)哪種抗生素能夠?qū)Ω鞣N菌都有效,并且常常也會(huì)影響植物材料的正常生長(zhǎng)分化。另一些藥劑,雖有的殺菌效果好,但往往容易引起鹽害,也無(wú)法利用。

    12. 外植體的選擇

    為了使接種后的誘導(dǎo)得以成功,選擇的外植體應(yīng)該是幼嫩的,處于生長(zhǎng)旺盛時(shí)期的,而且選擇的外植體的體積不能過(guò)小,如若過(guò)小則會(huì)影響愈傷組織的形成,從而影響進(jìn)一步的分化。因此,一般接種的外植體體積在 0.5~1.0 cm2 的范圍內(nèi)即可。最適的為莖尖、帶芽莖段,也可以利用葉子、子葉、根段、花器官組織等。

    13. 植物莖段組織培養(yǎng)需要注意哪些問(wèn)題

    以莖段進(jìn)行組織培養(yǎng)比較容易,一般取植物的嫩莖切段作為外植體,切成 0.5~1 cm 長(zhǎng)的小段進(jìn)行接種,保證每個(gè)莖段有一個(gè)芽點(diǎn)和一片葉子,將芽點(diǎn)部位以下垂直插入培養(yǎng)基凝膠中進(jìn)行生根培養(yǎng)。

    14. 外植體接種需要注意的操作事項(xiàng)

    接種前首*行滅菌消毒,接種所用的鑷子、解剖刀、剪刀等工具需要提前高溫高壓滅菌,提早 10 分鐘打開(kāi)超凈工作臺(tái),滅紫外 15~20 min,操作人員要用 75% 的酒精棉球擦手、工作臺(tái)和器皿,解剖刀和鑷子等隨時(shí)擦酒精灼燒,晾涼后備用。在無(wú)菌培養(yǎng)皿中或?yàn)V紙上切割外植體,接種到培養(yǎng)基表面,注意瓶口傾斜接近酒精燈火焰。

    15. 組織培養(yǎng)中材料褐化現(xiàn)象

    不同品種以及生理狀態(tài)引起的褐化狀態(tài)不同。培養(yǎng)基過(guò)高濃度的無(wú)機(jī)鹽及高水平細(xì)胞分裂素會(huì)使褐化現(xiàn)象加重。培養(yǎng)條件不當(dāng),例如光照過(guò)強(qiáng)、溫度過(guò)高、培養(yǎng)時(shí)間過(guò)長(zhǎng)等,均可使多酚氧化酶的活性提高,從而加重外植體的褐變程度。

    防治措施:選擇合適的外植體。選擇生長(zhǎng)處于旺盛的外植體,可以使褐變現(xiàn)象明顯減輕。合適的培養(yǎng)條件,無(wú)機(jī)鹽成分、植物生長(zhǎng)物質(zhì)水平、適宜溫度、及時(shí)繼代培養(yǎng)均可以減輕材料的褐變現(xiàn)象。使用抗氧化劑,在培養(yǎng)基中,使用半胱氨酸、抗壞血酸、PVP 等抗氧化劑能夠較為有效地避免或減輕很多外植體的褐變現(xiàn)象。另外使用 0.1%~0.5% 的活性炭對(duì)防止褐變也有較為明顯的效果。連續(xù)轉(zhuǎn)移,對(duì)容易褐變的材料可間隔 12~24 小時(shí)的培養(yǎng)后,再轉(zhuǎn)移到新的培養(yǎng)基上,這樣經(jīng)過(guò)連續(xù)處理 7~10 天后,褐變現(xiàn)象便會(huì)得到控制或大為減輕。

    16. 材料玻璃化問(wèn)題

    植物材料不斷地進(jìn)行離體繁殖時(shí),有些培養(yǎng)物的嫩莖、葉片往往會(huì)呈半透明狀,呈水跡狀,這種現(xiàn)象通常稱(chēng)為玻璃化。玻璃化為試管苗的生理失調(diào)癥,試管苗生長(zhǎng)緩慢、玻璃化的嫩莖不宜誘導(dǎo)生根,繁殖系數(shù)有所下降。當(dāng)培養(yǎng)基上細(xì)胞分裂素水平較高時(shí),容易出現(xiàn)玻璃化現(xiàn)象。愈傷組織的玻璃化問(wèn)題主要表現(xiàn)在培養(yǎng)過(guò)程中愈傷組織松散,脆易碎。葉子或是長(zhǎng)出的愈傷一段時(shí)間后在其周?chē)霈F(xiàn)水漬化,繼而影響整個(gè)培養(yǎng)基。

    防治措施: 在培養(yǎng)基中添加少量聚乙烯醇、脫落酸等物質(zhì),降低培養(yǎng)基中細(xì)胞分裂素含量及含氮化合物的用量,選用低 NH4 +水平的 B5 培養(yǎng)基,都能夠在一定程度上減輕玻璃化的現(xiàn)象發(fā)生。增加光照,對(duì)減輕試管苗玻璃化的現(xiàn)象有明顯的作用;在培養(yǎng)基中添加活性炭、馬鈴薯汁、間本三酚等可有效的減輕和防止玻璃化。

    17. 材料水浸狀、變色、壞死、莖斷面附近干枯

    可能原因:表面殺菌劑過(guò)量,消毒時(shí)間過(guò)長(zhǎng),外植體選用不當(dāng)(部位或時(shí)期)。

    改進(jìn)措施:調(diào)換其他殺菌劑或降低濃度,縮短消毒時(shí)間,試用其他部位,生長(zhǎng)初期取材。


    18. 材料長(zhǎng)期培養(yǎng)幾乎無(wú)反應(yīng)

    可能原因:培養(yǎng)基不適合,生長(zhǎng)素的選擇和用量不當(dāng),植物激素對(duì)生長(zhǎng)發(fā)育和生理過(guò)程的調(diào)節(jié)作用,往往不是某一種植物激素的單獨(dú)效果。環(huán)境溫度不適宜。

    改進(jìn)措施:更換培養(yǎng)基或調(diào)整培養(yǎng)基成分,尤其是調(diào)整鹽離子濃度;調(diào)整激素的種類(lèi)與配比,增加生長(zhǎng)素用量,例如使用人工合成的生長(zhǎng)素類(lèi)似物 2,4 -D 等可有效促進(jìn)細(xì)胞分裂和伸長(zhǎng),新器官的分化和形成;調(diào)整培養(yǎng)溫度等環(huán)境條件。


    19. 愈傷組織生長(zhǎng)過(guò)旺疏松

    可能原因: 由于培養(yǎng)基中激素添加過(guò)量,培養(yǎng)室溫度偏高,礦物質(zhì)等無(wú)機(jī)鹽含量不當(dāng)?shù)纫蛩匾鸬摹?/p>

    改進(jìn)措施:根據(jù)不同的品種、不同組織、不同器官,應(yīng)適當(dāng)減少激素用量,適當(dāng)降低培養(yǎng)溫度,調(diào)整無(wú)機(jī)鹽(尤其是銨鹽)含量,適當(dāng)提高瓊脂用量增加培養(yǎng)基硬度,避免愈傷組織生長(zhǎng)過(guò)旺和疏松現(xiàn)象發(fā)生。

    20. 愈傷組織生長(zhǎng)緩慢太緊密

    可能原因:細(xì)胞分裂素和生長(zhǎng)素的用量過(guò)多,糖濃度過(guò)高。

    改進(jìn)措施:減少細(xì)胞分裂素用量,調(diào)整細(xì)胞分裂素與生長(zhǎng)素比例,降低糖濃度。

    21. 愈傷組織分化率低,畸形,分化出的芽多為葉狀芽或叢芽,芽生長(zhǎng)困難,不易成苗。培養(yǎng)時(shí)間長(zhǎng)時(shí),再次愈傷組織化

    可能原因:生長(zhǎng)素用量偏高,溫度偏高。

    改進(jìn)措施:減少生長(zhǎng)素用量,可以通過(guò)分化培養(yǎng)時(shí)在培養(yǎng)基中添加 GA3(濃度在 0.5~2 mg/L 之間)解決,并適當(dāng)降低愈傷組織的培養(yǎng)溫度。


    22. 叢生苗過(guò)于細(xì)弱,不適于生根或移栽

    可能原因:細(xì)胞分裂素濃度過(guò)高或赤霉素使用不當(dāng),產(chǎn)生過(guò)多的不定芽;溫度過(guò)高,光照短,光強(qiáng)不足;不及時(shí)的轉(zhuǎn)移和分切,生長(zhǎng)空間小。

    改進(jìn)措施:減少細(xì)胞分裂素用量,免用赤霉素;延長(zhǎng)光照時(shí)間,增強(qiáng)光照;及時(shí)轉(zhuǎn)接;降低接種密度;更換透氣的封口膜等。


    23. 組織培養(yǎng)過(guò)程中出現(xiàn)黃化

    引起黃化的主要原因是培養(yǎng)基中 Fe 的含量不足,各種礦質(zhì)營(yíng)養(yǎng)不均衡;培養(yǎng)環(huán)境通氣不良,瓶?jī)?nèi)有害氣體積累(乙烯、氨氣、甲醛)等會(huì)引起植物材料黃化脫落;激素配比不當(dāng);糖用量不足或長(zhǎng)時(shí)間不轉(zhuǎn)移;pH 值變化過(guò)大;培養(yǎng)溫度不適;光照不足等。

    改進(jìn)措施:改善組培條件,在配制培養(yǎng)基過(guò)程中檢查儀器設(shè)備是否準(zhǔn)確;降低組培苗的接種密度,及時(shí)轉(zhuǎn)接培養(yǎng)物;使用透氣的封口膜改善瓶?jī)?nèi)通氣狀況;適當(dāng)調(diào)節(jié) pH 值、激素配比和無(wú)機(jī)鹽濃度;控制培養(yǎng)室內(nèi)溫度,適當(dāng)增加光照。


    24. LED 光源在植物組織培養(yǎng)中的選擇

    光是植物生長(zhǎng)中最重要的環(huán)境因子之一,并不是所有的光都有助于植物的光合作用。LED 光源 460nm 左右的藍(lán)光和 660nm 左右的紅光是植物最需要的光波,對(duì)植物的生長(zhǎng)發(fā)育起著關(guān)鍵性的作用。


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