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神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞培養(yǎng)實(shí)驗(yàn)

發(fā)布時(shí)間： 2023-01-05　　點(diǎn)擊次數(shù)： 1921次

材料與儀器
大鼠
CMF-Hanks液胰蛋白酶 DMEM F12
水浴鍋培養(yǎng)箱
步驟
一、原代培養(yǎng)

1. 選用生后1周的新生大白鼠，用碘酒,酒精棉球消毒，斷頭取其大腦皮層組織。

2. 解剖顯微鏡下，剝離腦膜，切除大腦髓質(zhì)部分。

3. 將大腦皮質(zhì)在無Ca2+、Mg2+Hanks液(CMF-Hanks液)中剪碎。

4. 室溫下靜置10 min。

5. 在37℃水浴箱中用0.125%的胰蛋白酶(用CMF-Hanks液配制)消化30 min。

6. 加入少許含20%血清的DMEM/F12(DMEM與F12為1:1)混合培養(yǎng)液(下同)，用吸管稍加吹打至胰酶液與培養(yǎng)液混勻。離心5 min(1 000 r/min)。

7. 吸去上清含酶液，重新加入含血清培養(yǎng)液，用吸管反復(fù)吹打至組織塊消散為止。制成細(xì)胞懸液(暫稱初細(xì)胞懸液)。

8. 將初細(xì)胞懸液接種到玻璃瓶(或培養(yǎng)皿)中，于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中孵育30 min。

9. 翻轉(zhuǎn)培養(yǎng)瓶,吸出瓶中的細(xì)胞懸液。用孔徑為75μm的不銹鋼網(wǎng)過濾。

10. 將濾過液離心10 min(1 000 r/min)，濃縮成約3ml的細(xì)胞懸液(暫稱為次細(xì)胞懸液)。

11. 將次細(xì)胞懸液種植到預(yù)先涂布有多聚賴氨酸的培養(yǎng)瓶中。接種的細(xì)胞密度約1×104個(gè)/cm2。

12. 置CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)3-5h,再補(bǔ)加足夠的培養(yǎng)液,繼續(xù)培養(yǎng)9-14 h。培養(yǎng)液顏色略微變黃時(shí)換液。

二、原代培養(yǎng)物的傳代

1. 吸取舊培養(yǎng)液用CMF-Hanks液洗滌2次。

2.加入少許0.125%的胰蛋白液消化15 min。以有血清培養(yǎng)液終止胰酶活性。

3.稍事手動(dòng)搖晃,倒掉含酶液。加入有血清培養(yǎng)液。

4.用吸管反復(fù)吹打使細(xì)胞從培養(yǎng)瓶壁脫落。收集細(xì)胞懸液,離心10 min(1 000 r/min)。棄上清液，給細(xì)胞沉淀物再加入培養(yǎng)液制成細(xì)胞懸液。

5.重復(fù)原代培養(yǎng)時(shí)8-10步。

6.將細(xì)胞懸液按0.5×105個(gè)/cm2的密度種植在經(jīng)鼠尾膠原包被的培養(yǎng)瓶中。

7.送入CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)3-5 h，再加足夠的培養(yǎng)液,繼續(xù)培養(yǎng)。

三、結(jié)果

分離的大鼠大腦皮質(zhì)細(xì)胞在原代培養(yǎng)4 h后，部分細(xì)胞即可長出細(xì)小胞突。培養(yǎng)3-4 d之后，細(xì)胞數(shù)量便明顯增大。大鼠大腦皮質(zhì)細(xì)胞原代培養(yǎng)一般在9-14 d，以星形膠質(zhì)細(xì)胞為主的細(xì)胞即可長滿培養(yǎng)瓶壁。

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